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免疫組化:
融合了免疫學(xué)原理(抗原抗體特異性結(jié)合)和組織學(xué)技術(shù)(組織的取材、固定、包埋、切片、脫蠟、水化等),通過(guò)化學(xué)反應(yīng)使標(biāo)記抗體的顯色劑 (熒光素、酶、金屬離子、同位素)顯色,來(lái)對(duì)組織(細(xì)胞)內(nèi)抗原(多肽和蛋白質(zhì))進(jìn)行定位、定性及相對(duì)定量的研究(主要是定位)。樣本是細(xì)胞或組織,稱(chēng)為免疫組織化學(xué)技術(shù)(immunohistochemistry)或免疫細(xì)胞化學(xué)技術(shù)(immunocytochemistry)。要在顯微鏡下觀察結(jié)果,可能出現(xiàn)膜陽(yáng)性、質(zhì)陽(yáng)性和核陽(yáng)性。
免疫印跡(immunoblotting)又稱(chēng)蛋白質(zhì)印跡(Western blotting),
是根據(jù)抗原抗體的特異性結(jié)合檢測(cè)復(fù)雜樣品中的某種蛋白的方法。先要進(jìn)行SDS-PAGE,然后將分離開(kāi)的蛋白質(zhì)樣品用電轉(zhuǎn)儀轉(zhuǎn)移到固相載體上,而后利用抗原-抗體-標(biāo)記物顯色來(lái)檢測(cè)樣品,可以用于定性和半定量。結(jié)合化學(xué)發(fā)光檢測(cè),可以同時(shí)比較多個(gè)樣品同種蛋白的表達(dá)量差異。
實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/span>
免疫組化 IHC / IF / ICC ——蛋白定位檢測(cè)分析首選
定位較直接準(zhǔn)確
定性靈敏度高
半定量(高質(zhì)量染色,背景淺,特異性強(qiáng)的切片;表達(dá)量較多的蛋白)
免疫印跡試驗(yàn) Western blot
測(cè)樣品內(nèi)蛋白含量,定量較IHC更準(zhǔn)確
定性和間接定位,敏感性遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于免疫組化技術(shù)
實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備-抗體
品牌選擇:文獻(xiàn)出處(biorbyt目前有1000個(gè)一抗在外文文獻(xiàn)中引用),試用裝預(yù)實(shí)驗(yàn)
biorbyt可以提供各種研究領(lǐng)域159052種不同貨號(hào)的一抗,包括單抗/多抗,直標(biāo)抗體,磷酸化抗體,病毒抗體;各種標(biāo)記的二抗
biorbyt目前有1000多個(gè)抗體產(chǎn)品已在外文文獻(xiàn)中引用
以CD133 antibody orb99113為例
一抗:
---抗體名稱(chēng)(蛋白全名,uniprot ID)
---實(shí)驗(yàn)類(lèi)型(IHC, WB, FACS,ELISA)
---來(lái)源/種屬(rabbit,mouse,rat, human, goat等)
---react with (human, mouse, rat, chicken,sheep, cow, pig, guinea pig等)
---單抗(特異性高,親和力弱,靈敏度低),多抗(特異性低,親和力強(qiáng),靈敏度高)
---分析樣本中目的蛋白的結(jié)構(gòu)性質(zhì)(待測(cè)樣本蛋白結(jié)構(gòu)域,樣品處理過(guò)程影響)
二抗
---根據(jù)一抗種屬來(lái)源而決定二抗來(lái)源
---標(biāo)記物的選擇。有HRP, Biotin, FITC,CY3, CY5, PE
直標(biāo)一抗
---適用于直接免疫實(shí)驗(yàn)(組化,熒光,流式,WB)特異性高,避免非特異染色,快速方便,敏感度低
---親和性好的抗體才能進(jìn)行抗體標(biāo)記
抗體穩(wěn)定性
--純度,高純度,保障其的穩(wěn)定性
--濃度,高濃度減少容器表面吸附造成的物質(zhì)損失,穩(wěn)定性更好
抗體保存
--避免反復(fù)凍融,分裝保存在-20℃
--復(fù)融抗體:如果一次用不完,將剩余母液保存在4℃,避免再凍起來(lái)
--抗體工作液:應(yīng)該當(dāng)天配制當(dāng)天用完,4℃保存盡量不要超過(guò)1天
--大部分抗體收到后4℃短暫保存1~2周對(duì)抗體活性沒(méi)有影響
--運(yùn)輸條件:一般的運(yùn)輸過(guò)程需要1~2周的時(shí)間,在低溫4℃的條件下來(lái)完成的
三:免疫組化、免疫印跡對(duì)比——實(shí)驗(yàn)(樣本)準(zhǔn)備
實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備-免疫組化實(shí)驗(yàn)樣本
(新鮮,固定方式,充分脫水,防脫處理)
1.取材新鮮,及時(shí)固定:防止離體太久而發(fā)生組織自溶長(zhǎng)菌,抗原擴(kuò)散或丟失,易保存
2.固定液:
(1)醛類(lèi):形態(tài)結(jié)構(gòu)保存好,穿透性強(qiáng),組織收縮少;醛基與蛋白氨基交聯(lián)形成羧甲基,使抗原決定簇不能充分暴露,需要抗原修復(fù)
- 4%多聚甲醛(常用,適用大多數(shù)組織,細(xì)胞)
- 10%福爾馬林/甲醛(常用,脂肪類(lèi),脊髓類(lèi))
-戊二醛(微細(xì)結(jié)構(gòu)保存好,用于電鏡)
(2)醇類(lèi):穿透性強(qiáng),脫水性強(qiáng),易引起組織收縮,使蛋白變性作用輕,抗原可流失。
-乙醇,甲醇
(3)其他固定劑
-丙酮,抗原保存性好,脫色性更強(qiáng),常用于部分細(xì)胞爬片
-混合固定劑,Bouni 液,Zamboni液,AAF液等
固定時(shí)間:醛類(lèi)建議24小時(shí)以內(nèi),醇類(lèi),丙酮2小時(shí)以內(nèi),組織大小厚度略有差異
3. 充分脫水:保存時(shí)間長(zhǎng),防止裂片,保持組織結(jié)構(gòu),防止冰切形成冰晶
4. 防脫處理:防止掉片,多聚賴(lài)氨酸防脫切片,明膠和硫酸鉻鉀處理等
免疫組化切片類(lèi)型
1.石蠟切片
易保存(干燥低溫4~8℃保存),厚度3~6um,結(jié)構(gòu)形態(tài)好,需要抗原修復(fù),抗原活性偏低(烤片,固定等)
2.冰凍切片
不易保存(-80℃保存半年),厚度10~20um,形態(tài)結(jié)構(gòu)較差,抗原活性高,不一定抗原修復(fù),胞內(nèi)核內(nèi)抗原需打孔
冰凍切片是否需要抗原修復(fù)?如何固定?
(1)不能及時(shí)切片染色觀察:可選擇固定(24小時(shí)內(nèi))后切片,需要修復(fù);或馬上包埋切片后固定(10 min以內(nèi)),可修復(fù)可不修復(fù)
(2)馬上切片染色觀察的,可不固定,可不修復(fù)
3.細(xì)胞爬片(貼壁,半貼壁,懸。
單層細(xì)胞,均勻爬片,選擇合適的固定方式保證細(xì)胞形態(tài),細(xì)胞周期同一化,不需要修復(fù)
---培養(yǎng)皿/平板 ---蓋玻片爬片
實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備-WB實(shí)驗(yàn)樣本
新鮮制備,低溫 裂解 (全蛋白,不包括核抽提、亞細(xì)胞器分離等)
裂解液,蛋白酶抑制劑,磷酸酶抑制劑
研磨(組織),液氮(小體積組織),超聲波(細(xì)菌/細(xì)胞)
跑膠,蛋白定量
Notice:
防止蛋白降解,磷酸化蛋白防止去磷酸化
濃度低蛋白量少不易檢測(cè),濃度高裂解液粘稠不易吸取
分泌型蛋白,無(wú)血清細(xì)胞培養(yǎng)收集上清,TCA沉淀富集
四:免疫組化、免疫印跡對(duì)比——實(shí)驗(yàn)方案
實(shí)驗(yàn)方案-免疫組化 IHC-P
脫蠟和水化,時(shí)間由二甲苯新鮮程度和室溫等綜合決定
抗原修復(fù),修復(fù)強(qiáng)度:高壓修復(fù)>微波修復(fù)>胰酶修復(fù);修復(fù)液多種,EDTA>檸檬酸;85~95℃處理約15min,自然冷卻至室溫
細(xì)胞通透,TritonX-100, >10 um厚切片
滅活內(nèi)源性過(guò)氧化物酶和生物素,3% H2O2 10~12min
血清封閉,小牛血清、BSA、羊血清, 不能與一抗來(lái)源一致
抗體孵育,濃度*重要,溫度決定反應(yīng)速度,時(shí)間決定反應(yīng)量
--- 4℃過(guò)夜(16~24h),次日37 ℃復(fù)溫 30 min,反應(yīng)溫和,背景淺
--- 37 ℃ (1-2 h),反應(yīng)速度快,時(shí)間短
--- 室溫,無(wú)法保證每次環(huán)境溫度控制在一定范圍,不建議
抗體稀釋液(PBS, 專(zhuān)用的, PH7.4)
切片清洗(浸洗、沖洗和漂洗,普通5 min*3 ,抗體10min*4)
DAB顯色,由顯微鏡下控制顯色時(shí)間,決定背景的深淺和特異性染色的深淺
復(fù)染,目的是形成細(xì)胞輪廓,從而更好地對(duì)目標(biāo)蛋白進(jìn)行定位,胞漿蛋白適當(dāng)時(shí)間長(zhǎng)一點(diǎn),核蛋白則要短。
長(zhǎng)期保存,高倍鏡觀察,需脫水透化
封片,中性樹(shù)膠等封片,避免產(chǎn)生氣泡
免疫熒光注意避光,防止熒光衰減淬滅,防止自發(fā)熒光現(xiàn)象
雙標(biāo)免疫熒光實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
2個(gè)間標(biāo)抗體,需要不同host,不同的熒光標(biāo)記物
2個(gè)直標(biāo)抗體,可以同host,不同的熒光標(biāo)記物
1個(gè)間標(biāo)抗體+1個(gè)直標(biāo)抗體,不同host,不同熒光標(biāo)記物,兩抗體可共同孵育
1個(gè)間標(biāo)抗體+1個(gè)直標(biāo)抗體,同host,不同熒光標(biāo)記物,需先孵育間標(biāo)+二抗,后再孵育直標(biāo)
實(shí)驗(yàn)方案-Western blot
跑膠,分離膠濃度,轉(zhuǎn)膜條件
膜的選擇 0.45/0.22
--- NC,操作簡(jiǎn)單,強(qiáng)結(jié)合力,背景低,信噪比高,脆易卷,經(jīng)不起多度洗滌,適用多種顯色
---PVDF,蛋白截留力(強(qiáng)6倍)、機(jī)械強(qiáng)度、化學(xué)耐受性更強(qiáng),不適用熒光,預(yù)處理
監(jiān)測(cè)轉(zhuǎn)膜
分子量(kDa) | 分離膠濃度 | 濕轉(zhuǎn)條件 |
小于20 kDa | 15% | 200 mA 30 min |
20~100 kDa | 8%~12% | 200mA 50 min |
100~200 kDa | 6%~8% | 200 mA 90 min |
200~300 kDa | 6% | 200 mA 120 min |
封閉,5%脫脂奶粉/血清封閉(4℃過(guò)夜,或37℃ 搖床1~2 hour)
抗體孵育(4℃過(guò)夜,或37℃ 搖床 1~2 hour)
抗體稀釋液
洗膜 (3~4次,7~10min/次)
曝光
免疫組化結(jié)果常見(jiàn)問(wèn)題分析
結(jié)果陰性的原因
1. 抗體濃度和質(zhì)量問(wèn)題以及抗體來(lái)源選擇錯(cuò)誤;
2. 抗原修復(fù)不全,換修復(fù)液或加強(qiáng)修復(fù);
3. 組織切片本身這種抗原含量低,設(shè)陽(yáng)性對(duì)照片;
4. 血清封閉時(shí)間過(guò)長(zhǎng);DAB 孵育時(shí)間過(guò)短;
6. 細(xì)胞通透不全,抗體未能充分進(jìn)入胞內(nèi)參與反應(yīng)。
非特異性染色的原因(著色一片黃/背景深)
1. 抗體孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng),抗體濃度;
2. 多抗易出現(xiàn)非特異性,可選擇單抗;
3. 內(nèi)源性過(guò)氧化物酶和生物素滅活不夠;
4. 非特異性組分與抗體結(jié)合,延長(zhǎng)血清封閉時(shí)間;
5. DAB 孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或濃度過(guò)高;
6. PBS 沖洗不充分,殘留抗體結(jié)果增強(qiáng)著色;
7. 標(biāo)本染色過(guò)程中經(jīng)常出現(xiàn)干片;
8. 脫蠟不充分;
9. 二抗與標(biāo)本的內(nèi)源性組織蛋白有交叉反應(yīng)。
染色弱陽(yáng)性
1. 固定方式不當(dāng)或固定時(shí)溫度過(guò)高,影響到抗原的數(shù)量和質(zhì)量;
2. 不適當(dāng)?shù)目乖迯?fù)方式,抗原決定簇暴露不足;
3. 抗體的稀釋度是否過(guò)高或者孵育的溫度/時(shí)間不足;
4. 孵育抗體前切片上遺留了過(guò)多的沖洗液;
5. 孵育時(shí)切片未放置水平,導(dǎo)致抗體孵育不均勻。
信號(hào)定位與預(yù)測(cè)不符的原因
1. 組織固定不及時(shí),抗原擴(kuò)散移位;
2. 抗體選擇錯(cuò)誤;
3. 膜蛋白核質(zhì)染色:抗原修復(fù)過(guò)長(zhǎng),導(dǎo)致細(xì)胞膜破壞,膜蛋白轉(zhuǎn)移。
WB結(jié)果常見(jiàn)問(wèn)題分析
1. 無(wú)條帶:抗體用錯(cuò),轉(zhuǎn)膜出錯(cuò),抗原無(wú)表達(dá),試劑失效等;
2. 細(xì)微弱帶:上樣量少,抗體濃度低,ECL發(fā)光液失效等;
3. 高背景:封閉不夠,一抗?jié)舛雀撸茨げ怀浞郑?/span>
4. 非特異性條帶:抗體特異性差,也可能樣品量大,抗體濃度高;
5. 條帶出現(xiàn)邊緣規(guī)則的白圈:轉(zhuǎn)膜時(shí)膜和膠之間有氣泡;
6. 條帶中間出現(xiàn)白色:高濃度HRP把底物消耗過(guò)快后不發(fā)光;
7. 膜上很多黑點(diǎn):膜上雜質(zhì)與抗體非特異結(jié)合,洗膜充分,封閉液混勻;
8. 條帶拖尾:蛋白裂解不好,蛋白量大,抗體孵育時(shí)間長(zhǎng),濃度高等;
9. 出現(xiàn)非均一性背景:洗抗體和發(fā)光時(shí)膜出現(xiàn)風(fēng)干情況;
10. 條帶彎曲不平整:膠配置不均勻,膠中有氣泡雜質(zhì),玻璃板沒(méi)洗干凈,電流不均一等;
11. 條帶蛋白分子量偏高/偏低:分離膠濃度選擇不恰當(dāng),蛋白質(zhì)降解;
12. 所有條帶練成片:上樣量大或電泳中途停止過(guò)長(zhǎng),樣品彌散。
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