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2D 電泳細(xì)胞裂解液使用說(shuō)明
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上傳時(shí)間:2015/7/10 10:23:41
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一、 試劑盒說(shuō)明
樣品制備是雙向電泳中*為關(guān)鍵的一步,這一步處理的好壞將直接影響 2D 電泳結(jié)果。 2D 電泳細(xì)胞裂解液(總蛋白)可以幫助您方便地從動(dòng)物組織和細(xì)胞中提取總蛋白(含可溶性膜蛋白)。
二、 試劑盒組份
組份 | 含量 | 儲(chǔ)存溫度 |
2D 電泳細(xì)胞裂解液(總蛋白) | 50 mL | 2-8℃ |
DTT | 0.5 mL | -20℃,避光 |
備注:
1.為取得*佳的使用效果,盡量避免過(guò)多的反復(fù)凍融。建議可適當(dāng)分裝后使用。
2.所有接觸樣品的用具及試劑均需預(yù)冷。裂解蛋白的所有步驟都需在冰浴或 4℃進(jìn)行。
3.可參考凱基產(chǎn)品相關(guān)說(shuō)明(見(jiàn)凱基網(wǎng)站)或通過(guò)預(yù)實(shí)驗(yàn)來(lái)確定適合您實(shí)驗(yàn)條件的*佳裂解液。
4.提取蛋白后,如有必要,可透析除去表面活性劑。
5.為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。
6.DTT 在蛋白裂解工作液臨用前 1:100 加入 2D 電泳細(xì)胞裂解液(總蛋白)中,現(xiàn)用現(xiàn)配。
三、操作步驟
Ⅰ 實(shí)體組織蛋白的提取
(1) 采集新鮮組織樣本;
(2) 用研缽在液氮冷凍條件下將樣品研成粉末,每 100mg 樣品加入 0.4-0.5ml 裂解液工作液中,使用組織勻漿器 勻漿 30s(注意 1)。
(3) 組織懸液 15℃,20 000×g 離心 30 min(注意 2)。
(3) 吸取上清。沉淀用 1/4 體積的步裂解液用量重懸,渦旋劇烈震蕩 30s 后,15℃,20 000×g 離心 30 min。
(4) 合并兩次上清液,吸取少量上清用 Bradford 法定量蛋白,然后分裝至 Eppendof 管里保存在-70℃?zhèn)溆?span>。(注 意 3)
Ⅱ 培養(yǎng)細(xì)胞蛋白提取
(1) 培養(yǎng)細(xì)胞的收集;
(2) 用磷酸緩沖液(PBS)洗細(xì)胞 3 次(室溫,1000g,各 2min);
(3) 將細(xì)胞分裝到 1.5ml Eppendof 管中,吸干殘留的 PBS;
(4) 加入裂解緩沖工作液(1.5x106 個(gè)細(xì)胞大約加入 100µL 裂解液),在室溫振蕩 1h,使其充分溶解(注意 1);
(5) 4oC,40,000g,離心 1h(注意 2);
(6)吸取上清并用 Bradford 法定量蛋白,然后分裝至 Eppendof 管里保存在-78oC 備用(注意 3)。
四、注意事項(xiàng)
1. 核酸的去除可采用超聲或核酸酶處理,超聲處理應(yīng)控制好條件,防止產(chǎn)生泡沫;加入的外源核酸酶則會(huì)出現(xiàn)在*終 的 2D 膠上。
2. 脂類和多糖都可以通過(guò)超速離心除去。
3. 透析可以降低鹽濃度,也可以采取凝膠過(guò)濾或沉淀/重懸法脫鹽,但會(huì)造成蛋白質(zhì)的部分損失。
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